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胚胎干細(xì)胞培養(yǎng)操作規(guī)程

[2015/2/6]

  維持ES細(xì)胞處于未分化狀態(tài):

  ES細(xì)胞培養(yǎng)用含有 ESGRO(白血病抑制因子)的高糖培養(yǎng)基來阻止細(xì)胞的分化。為細(xì)胞提供包被有0.1%明膠的平板作為粘附細(xì)胞的基質(zhì)。建議每2-3天從達(dá)到 80%-90%融合的平板按1:8的比率傳代細(xì)胞一次,細(xì)胞傳代以后,在將細(xì)胞接種在0.1%明膠包被的培養(yǎng)皿之前,通過預(yù)先將細(xì)胞接種在沒有經(jīng)過包被的組織培養(yǎng)板2個(gè)小時(shí),使分化細(xì)胞粘附,從而將分化和未分化細(xì)胞分開。將細(xì)胞全程置于37℃,5%CO2,100%濕度條件下培養(yǎng)。

  培養(yǎng)基:ES:配制一20×不含DMEM,HS,ESGRO的溶液(該溶液也能用于EB培養(yǎng)基--見下文)。分裝在50ml FALCON管中,(稀釋為2×,每管42ml),貯存在-20℃。通過將21ml該溶液,HS和ESGRO加入450mlDMEM中制備培養(yǎng)基,0.2μm濾膜過濾。貯存于4℃。

  注:一瓶DMEM是500ml。

  貯存液:DMEM(高糖)、馬血清(HS)、L-谷氨酰胺(200mM)、MEM NEAA(10mM)、HEPES(1M)、β-巰基乙醇(55Mm)、PEST、ESGRO。

  復(fù)蘇細(xì)胞:細(xì)胞被凍存在10%二甲基亞砜(DMSO)中防止結(jié)晶的形成,結(jié)晶的形成會損害細(xì)胞。然而,二甲基亞砜對細(xì)胞有毒性,快速的進(jìn)行細(xì)胞復(fù)蘇是很重要的。

  操作步驟:

  1.從液氮中取出一管細(xì)胞;

  2.將凍存管置于37℃水浴中2分鐘(或放到管內(nèi)溶液恰好完全溶解);

  3.將細(xì)胞轉(zhuǎn)移到一15ml Falcon管中;

  4.加入5ml ES培養(yǎng)基(用培養(yǎng)基沖洗凍存管);

  5.離心3分鐘;

  6.棄上清,用2ml ES培養(yǎng)基重懸細(xì)胞,至少吹打10次;

  7.接種在明膠包被(見下文)的6孔或6cm組織培養(yǎng)皿;

  8.孵育。

  凍存細(xì)胞

  凍存液:90%HS和10%二甲基亞砜

  步驟:

  1.1×PBS洗細(xì)胞并留少許PBS在培養(yǎng)皿內(nèi);

  2.用細(xì)胞刮刀收集細(xì)胞;

  3.將細(xì)胞轉(zhuǎn)入15ml Falcon管內(nèi)并離心3分鐘;

  4.棄去上清并將細(xì)胞重懸于冷的凍存液中(10cm的培養(yǎng)皿用2ml,15cm的培養(yǎng)皿用6-7ml。)

  5.分裝于凍存管內(nèi),每管1ml;

  6.置-80℃過夜,第二天移入液氮。

  明膠包被:準(zhǔn)備500ml 0.1%明膠溶液

  1.將0.5g明膠溶解在500ml無鈣鎂的PBS中(50-65℃水浴15~30分鐘)。

  2.最好在溶液沒有冷卻的情況下通過0.2μm濾膜過濾,貯存在4℃。

  包被培養(yǎng)板或培養(yǎng)皿

  1.加入足量的明膠溶液覆蓋培養(yǎng)平面(15cm培養(yǎng)皿加2ml,10cm培養(yǎng)皿加0.5~1ml,溶液的量并不重要,只要能完全覆蓋培養(yǎng)表面就行了。);

  2.置室溫30分鐘;

  3.去除明膠溶液,將培養(yǎng)板貯存在包裝袋中室溫放置,最好將板子平方,以免明膠污染蓋子和流出培養(yǎng)板。