液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜測定面條和米粉中的硫脲
[2013/4/8]
摘要:硫脲又稱硫代尿素,是一種紡織品的化學(xué)漂白劑,曾一度作為防腐劑,廣泛用于各類需要漂白、保鮮防腐的食品。向食品中加入硫脲可阻止褐變,表觀光亮,略帶半透明。硫脲被人體攝入后危害健康,抑制甲狀腺和造血器官的機(jī)能,引起中樞神經(jīng)麻痹及呼吸和心臟功能降低等,甚至導(dǎo)致死亡。
建立了米面制品中硫脲的液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜(LCMS/MS)測定方法。實(shí)驗(yàn)優(yōu)化了樣品提取方法、液相色譜條件和質(zhì)譜參數(shù)。樣品用80%乙醇超聲波提取,離子交換色譜分離,色譜柱為NUCLEOSIL1005SA陽離子交換柱,流動(dòng)相為乙腈(1%乙酸 0.2%乙酸銨)水溶液(30∶70),流速0.5mL/min。采用電噴霧質(zhì)譜正離子模式電離,多反應(yīng)選擇離子檢測,檢測離子對(duì)為m/z77/60和m/z77/43,其中m/z77/60為定量離子對(duì)。結(jié)果表明:本方法簡便快速、準(zhǔn)確可靠,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差<4.0%;回收率為83%~90%;檢出限為0.5mg/kg;定量下限為5mg/kg。
【關(guān)鍵詞】硫脲,液相色譜,串聯(lián)質(zhì)譜,面條,米粉
1引言
目前,空氣、水、土壤和生物等材料中硫脲的檢測方法已有報(bào)道[1~4],通常采用高效液相色譜法;Raffaelli等[5]報(bào)道了用大氣壓化學(xué)電離質(zhì)譜法測定廢水中的硫脲。但至今未見食品中硫脲檢測的相關(guān)報(bào)道。由于食品基質(zhì)復(fù)雜,采用液相色譜法干擾很大,且靈敏度較低。本研究采用液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜(LCMS/MS)法檢測面條和米粉中的硫脲,考察了樣品的提取方法,優(yōu)化了色譜條件和質(zhì)譜條件。本方法簡便快速、準(zhǔn)確可靠,檢出限為0.5mg/kg;定量下限為5mg/kg,適用于面條、米粉等米面制品中硫脲的測定。
2實(shí)驗(yàn)部分
2.1儀器與試劑
液相色譜/串聯(lián)四級(jí)桿質(zhì)譜聯(lián)用儀;超聲波發(fā)生器,功率250W,頻率33kHz。
硫脲(純度≥98.0%);硫脲標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制:以水為溶劑配制質(zhì)量濃度為1000mg/L的標(biāo)準(zhǔn)溶液,經(jīng)0.22μm濾膜過濾后作為儲(chǔ)備液。使用時(shí)用水逐級(jí)稀釋至所需濃度;乙腈和甲醇(HPLC級(jí));乙酸、乙酸胺、乙醇等;實(shí)驗(yàn)用水為二次蒸餾水。
2.2樣品預(yù)處理
將樣品用粉碎機(jī)粉碎,取2.0g粉碎后的樣品置于具塞三角瓶中,加入20.0mL80%乙醇溶液,蓋上蓋,超聲波振蕩提取15min,將超聲波提取后的樣品混合物全部轉(zhuǎn)移至離心管中,以3500r/min離心15min。移取上清液10.0mL至50mL燒杯中,在68℃水浴上濃縮至約1mL。然后轉(zhuǎn)移至5mL刻度試管中,用水洗滌燒杯多次,洗滌液合并入1.0mL刻度的梨形瓶中,在50℃下吹氮濃縮定容至1.0mL。
2.3LCMS/MS測定
2.3.1HPLC條件色譜柱:陽離子交換柱(250mm×4.6mm,5μm);流動(dòng)相:乙腈(1%乙酸 0.2%乙酸銨)水溶液(30∶70,V/V),流速0.5mL/min。進(jìn)樣量5.0μL。
2.3.2質(zhì)譜條件電噴霧(ESI)正離子電離模式。干燥氣(N2)溫度350℃;霧化氣(N2)壓力276kPa;干燥氣(N2)流量9.00L/min;電噴霧電壓4000V;檢測離子對(duì)為m/z77/60和m/z77/43,其中m/z77/60為定量離子對(duì);采集時(shí)間200ms;碎裂電壓80V;碰撞能量36V(m/z77/60)和48V(m/z77/43)。
2.3.3測定方法取樣品溶液和標(biāo)準(zhǔn)溶液各5.0μL注入液相色譜串聯(lián)四級(jí)桿質(zhì)譜儀進(jìn)行分析,以其標(biāo)準(zhǔn)溶液峰的保留時(shí)間和質(zhì)譜檢測離子對(duì)m/z77/60和m/z77/43為依據(jù)進(jìn)行定性分析,以定量離子對(duì)m/z77/60的峰面積計(jì)算樣品中硫脲的含量。
3結(jié)果與討論
3.1液相色譜條件的優(yōu)化
考察了C18柱、C8柱、NH2鍵合相柱及陽離子交換柱對(duì)硫脲分離的影響。結(jié)果表明:采用C18色譜柱時(shí),當(dāng)流動(dòng)相為乙腈水體系時(shí)[4],硫脲幾乎無保留;當(dāng)乙腈比例降低至10%時(shí),硫脲僅有少許保留,保留時(shí)間為2.7min(色譜柱規(guī)格為250mm×4.6mm,流速為1.0mL/min,下同);當(dāng)在流動(dòng)相中添加庚烷磺酸鹽離子對(duì)試劑時(shí),硫脲的保留時(shí)間并無明顯增加。采用C8色譜柱時(shí),當(dāng)流動(dòng)相為乙腈庚烷磺酸鹽體系時(shí),隨著乙腈比例從65%,40%至5%逐漸減少,硫脲的保留時(shí)間從2.9min,3.0min至3.3min逐步增加,但保留時(shí)間仍太短。采用NH2鍵合相色譜柱時(shí),當(dāng)流動(dòng)相為乙腈水體系時(shí),隨著乙腈比例依次從70%,80%,90%增加到100%,硫脲的保留時(shí)間也從3.47min,3.55min,3.65min延長到3.79min,但增加幅度不大,保留時(shí)間較短,且峰形較寬。采用陽離子交換色譜柱時(shí),當(dāng)流動(dòng)相為乙腈磷酸鹽緩沖液和乙腈乙酸銨緩沖液體系時(shí),乙腈比例為30%時(shí),硫脲的保留時(shí)間為3.4min,峰形較理想;隨著乙腈比例的減少,硫脲的保留時(shí)間雖逐步增加,但增加幅度不大且色譜峰展寬嚴(yán)重;改變緩沖液的濃度和pH值,硫脲的保留時(shí)間并無明顯改變。
以上實(shí)驗(yàn)表明,硫脲由于相對(duì)分子質(zhì)量很小,極性較強(qiáng),在各類型的色譜柱上保留時(shí)間均較小,用液相色譜紫外檢測法測定實(shí)際樣品時(shí)受到的干擾較嚴(yán)重。因此采用液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法測定。考慮到質(zhì)譜法測定不能使用離子對(duì)試劑、磷酸鹽緩沖液作流動(dòng)相,并綜合考慮保留時(shí)間和色譜峰形,故選擇陽離子交換色譜柱和乙腈乙酸銨緩沖液體系。經(jīng)實(shí)驗(yàn)本方法最終選擇的色譜柱為陽離子交換柱(250mm×4.6mm,5μm),流動(dòng)相為乙腈(1%乙酸 0.2%乙酸銨)水溶液(30∶70,V/V),流速0.5mL/min。此條件下硫脲的保留時(shí)間為6.7min,峰形較好。
3.2質(zhì)譜參數(shù)的優(yōu)化
用0.5mg/L硫脲標(biāo)準(zhǔn)溶液,采用ESI正離子模式進(jìn)行一級(jí)質(zhì)譜掃描,得到硫脲準(zhǔn)分子離子峰m/z77,即[M H] 。以m/z77為母離子作二級(jí)質(zhì)譜,得到硫脲碎片離子峰m/z60和43,即[M H-NH3] 和[M H-H2S] 。選擇m/z77/60和m/z77/43離子對(duì)進(jìn)行MRM模式檢測,并對(duì)各質(zhì)譜參數(shù)進(jìn)行優(yōu)化。優(yōu)化后的質(zhì)譜條件見2.3.2節(jié)。硫脲的( )ESI二級(jí)質(zhì)譜圖見圖1。優(yōu)化后的硫脲標(biāo)準(zhǔn)溶液的HPLCMS/MS色譜圖見圖2。
3.3樣品前處理?xiàng)l件的優(yōu)化
3.3.1不同提取劑對(duì)硫脲提取效果的影響比較了用氯仿、甲醇、乙醇、乙腈和水作提取劑的提取效果。在2.0g粉碎后的面條樣品中加入11.6mg/L硫脲標(biāo)準(zhǔn)溶液1.0mL,待溶液完全被樣品吸收后,再分別用氯仿、甲醇、乙醇、乙腈和水進(jìn)行超聲波振蕩提取。按前述LCMS/MS方法測定硫脲的提取效率。結(jié)果表明,氯仿幾乎無法提取出硫脲,甲醇、乙醇、乙腈和水的提取效率分別為86.5%,70.0%,67.1%和88.3%,可見以水作提取劑的效率最高。但用水提取時(shí),樣品中的淀粉及其它添加劑也會(huì)被提取出來,導(dǎo)致提取液混濁且粘稠,后續(xù)處理很麻煩;而用甲醇和乙醇提取雖然效率略低,但提取液較干凈,處理過程簡便快捷。因此結(jié)合二者的優(yōu)點(diǎn),考慮用甲醇或乙醇和水的混合溶劑進(jìn)行提取。分別考察了甲醇比例為20%~80%時(shí)的提取效果和乙醇比例為20%~80%時(shí)的提取效果,結(jié)果見表1。由表1可見,80%乙醇水混合溶劑的提取效果最佳。表1不同比例的醇和水對(duì)硫脲的提取效果
3.3.2提取時(shí)間對(duì)硫脲提取效果的影響考察了超聲波提取10,15,20,25和30min時(shí)的提取效果,其回收率分別為87.3%,88.1%,86.3%,85.6%和85.8%。可見超聲波提取時(shí)間對(duì)硫脲的提取效果影響不明顯,超聲10min后提取率已基本穩(wěn)定。本實(shí)驗(yàn)選擇超聲波提取時(shí)間為15min,可滿足分析要求。
綜合以上結(jié)果,確定樣品的最佳前處理?xiàng)l件為2.2節(jié)所述。由于采用MRM方式測定,避免了樣品基體雜質(zhì)的干擾,故樣品提取后無需凈化即可直接上機(jī)分析,簡便快速,回收率較高。
3.4線性范圍、線性方程與檢出限
取硫脲標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液逐級(jí)稀釋成0.501,1.002,2.004,5.01,10.02和20.04mg/L的系列標(biāo)準(zhǔn)溶液,進(jìn)行LCMS/MS分析。以峰面積(A)和質(zhì)量濃度(ρ,mg/L)作定量工作曲線,線性方程為A=1209ρ-30.91,相關(guān)系數(shù)為0.9999,在0.5~20mg/L濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。當(dāng)樣品中的硫脲超過此線性范圍時(shí),可適當(dāng)加大樣品的稀釋倍數(shù)。以信噪比S/N=3確定樣品的檢出限為0.5mg/kg,采用標(biāo)準(zhǔn)添加法進(jìn)行實(shí)測確定硫脲的定量下限為5.0mg/kg,可滿足米面制品中對(duì)硫脲的檢測要求。
3.5回收率和精密度
取不含硫脲的面條和米粉樣品各3組,分別加入5.01,10.02和50.10mg/kg硫脲標(biāo)準(zhǔn)溶液,待完全被樣品吸收后,按實(shí)驗(yàn)方法測定硫脲的回收率,每組樣品平行測定6次,結(jié)果見表2。由表2可見,面條樣品中硫脲在添加水平5~50mg/kg,其回收率為83%~89%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為0.8%~4.0%;米粉樣品中硫脲在添加水平5~50mg/kg,其回收率為88%~90%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.7%~3.3%。面條空白及加標(biāo)樣品的HPLCMS/MS總離子流色譜圖見圖3a和b。本方法回收率較難達(dá)到90%以上,可能是基質(zhì)表2標(biāo)準(zhǔn)加入樣品中硫脲的回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差。
建立了米面制品中硫脲的液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜(LCMS/MS)測定方法。實(shí)驗(yàn)優(yōu)化了樣品提取方法、液相色譜條件和質(zhì)譜參數(shù)。樣品用80%乙醇超聲波提取,離子交換色譜分離,色譜柱為NUCLEOSIL1005SA陽離子交換柱,流動(dòng)相為乙腈(1%乙酸 0.2%乙酸銨)水溶液(30∶70),流速0.5mL/min。采用電噴霧質(zhì)譜正離子模式電離,多反應(yīng)選擇離子檢測,檢測離子對(duì)為m/z77/60和m/z77/43,其中m/z77/60為定量離子對(duì)。結(jié)果表明:本方法簡便快速、準(zhǔn)確可靠,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差<4.0%;回收率為83%~90%;檢出限為0.5mg/kg;定量下限為5mg/kg。
【關(guān)鍵詞】硫脲,液相色譜,串聯(lián)質(zhì)譜,面條,米粉
1引言
目前,空氣、水、土壤和生物等材料中硫脲的檢測方法已有報(bào)道[1~4],通常采用高效液相色譜法;Raffaelli等[5]報(bào)道了用大氣壓化學(xué)電離質(zhì)譜法測定廢水中的硫脲。但至今未見食品中硫脲檢測的相關(guān)報(bào)道。由于食品基質(zhì)復(fù)雜,采用液相色譜法干擾很大,且靈敏度較低。本研究采用液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜(LCMS/MS)法檢測面條和米粉中的硫脲,考察了樣品的提取方法,優(yōu)化了色譜條件和質(zhì)譜條件。本方法簡便快速、準(zhǔn)確可靠,檢出限為0.5mg/kg;定量下限為5mg/kg,適用于面條、米粉等米面制品中硫脲的測定。
2實(shí)驗(yàn)部分
2.1儀器與試劑
液相色譜/串聯(lián)四級(jí)桿質(zhì)譜聯(lián)用儀;超聲波發(fā)生器,功率250W,頻率33kHz。
硫脲(純度≥98.0%);硫脲標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制:以水為溶劑配制質(zhì)量濃度為1000mg/L的標(biāo)準(zhǔn)溶液,經(jīng)0.22μm濾膜過濾后作為儲(chǔ)備液。使用時(shí)用水逐級(jí)稀釋至所需濃度;乙腈和甲醇(HPLC級(jí));乙酸、乙酸胺、乙醇等;實(shí)驗(yàn)用水為二次蒸餾水。
2.2樣品預(yù)處理
將樣品用粉碎機(jī)粉碎,取2.0g粉碎后的樣品置于具塞三角瓶中,加入20.0mL80%乙醇溶液,蓋上蓋,超聲波振蕩提取15min,將超聲波提取后的樣品混合物全部轉(zhuǎn)移至離心管中,以3500r/min離心15min。移取上清液10.0mL至50mL燒杯中,在68℃水浴上濃縮至約1mL。然后轉(zhuǎn)移至5mL刻度試管中,用水洗滌燒杯多次,洗滌液合并入1.0mL刻度的梨形瓶中,在50℃下吹氮濃縮定容至1.0mL。
2.3LCMS/MS測定
2.3.1HPLC條件色譜柱:陽離子交換柱(250mm×4.6mm,5μm);流動(dòng)相:乙腈(1%乙酸 0.2%乙酸銨)水溶液(30∶70,V/V),流速0.5mL/min。進(jìn)樣量5.0μL。
2.3.2質(zhì)譜條件電噴霧(ESI)正離子電離模式。干燥氣(N2)溫度350℃;霧化氣(N2)壓力276kPa;干燥氣(N2)流量9.00L/min;電噴霧電壓4000V;檢測離子對(duì)為m/z77/60和m/z77/43,其中m/z77/60為定量離子對(duì);采集時(shí)間200ms;碎裂電壓80V;碰撞能量36V(m/z77/60)和48V(m/z77/43)。
2.3.3測定方法取樣品溶液和標(biāo)準(zhǔn)溶液各5.0μL注入液相色譜串聯(lián)四級(jí)桿質(zhì)譜儀進(jìn)行分析,以其標(biāo)準(zhǔn)溶液峰的保留時(shí)間和質(zhì)譜檢測離子對(duì)m/z77/60和m/z77/43為依據(jù)進(jìn)行定性分析,以定量離子對(duì)m/z77/60的峰面積計(jì)算樣品中硫脲的含量。
3結(jié)果與討論
3.1液相色譜條件的優(yōu)化
考察了C18柱、C8柱、NH2鍵合相柱及陽離子交換柱對(duì)硫脲分離的影響。結(jié)果表明:采用C18色譜柱時(shí),當(dāng)流動(dòng)相為乙腈水體系時(shí)[4],硫脲幾乎無保留;當(dāng)乙腈比例降低至10%時(shí),硫脲僅有少許保留,保留時(shí)間為2.7min(色譜柱規(guī)格為250mm×4.6mm,流速為1.0mL/min,下同);當(dāng)在流動(dòng)相中添加庚烷磺酸鹽離子對(duì)試劑時(shí),硫脲的保留時(shí)間并無明顯增加。采用C8色譜柱時(shí),當(dāng)流動(dòng)相為乙腈庚烷磺酸鹽體系時(shí),隨著乙腈比例從65%,40%至5%逐漸減少,硫脲的保留時(shí)間從2.9min,3.0min至3.3min逐步增加,但保留時(shí)間仍太短。采用NH2鍵合相色譜柱時(shí),當(dāng)流動(dòng)相為乙腈水體系時(shí),隨著乙腈比例依次從70%,80%,90%增加到100%,硫脲的保留時(shí)間也從3.47min,3.55min,3.65min延長到3.79min,但增加幅度不大,保留時(shí)間較短,且峰形較寬。采用陽離子交換色譜柱時(shí),當(dāng)流動(dòng)相為乙腈磷酸鹽緩沖液和乙腈乙酸銨緩沖液體系時(shí),乙腈比例為30%時(shí),硫脲的保留時(shí)間為3.4min,峰形較理想;隨著乙腈比例的減少,硫脲的保留時(shí)間雖逐步增加,但增加幅度不大且色譜峰展寬嚴(yán)重;改變緩沖液的濃度和pH值,硫脲的保留時(shí)間并無明顯改變。
以上實(shí)驗(yàn)表明,硫脲由于相對(duì)分子質(zhì)量很小,極性較強(qiáng),在各類型的色譜柱上保留時(shí)間均較小,用液相色譜紫外檢測法測定實(shí)際樣品時(shí)受到的干擾較嚴(yán)重。因此采用液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法測定。考慮到質(zhì)譜法測定不能使用離子對(duì)試劑、磷酸鹽緩沖液作流動(dòng)相,并綜合考慮保留時(shí)間和色譜峰形,故選擇陽離子交換色譜柱和乙腈乙酸銨緩沖液體系。經(jīng)實(shí)驗(yàn)本方法最終選擇的色譜柱為陽離子交換柱(250mm×4.6mm,5μm),流動(dòng)相為乙腈(1%乙酸 0.2%乙酸銨)水溶液(30∶70,V/V),流速0.5mL/min。此條件下硫脲的保留時(shí)間為6.7min,峰形較好。
3.2質(zhì)譜參數(shù)的優(yōu)化
用0.5mg/L硫脲標(biāo)準(zhǔn)溶液,采用ESI正離子模式進(jìn)行一級(jí)質(zhì)譜掃描,得到硫脲準(zhǔn)分子離子峰m/z77,即[M H] 。以m/z77為母離子作二級(jí)質(zhì)譜,得到硫脲碎片離子峰m/z60和43,即[M H-NH3] 和[M H-H2S] 。選擇m/z77/60和m/z77/43離子對(duì)進(jìn)行MRM模式檢測,并對(duì)各質(zhì)譜參數(shù)進(jìn)行優(yōu)化。優(yōu)化后的質(zhì)譜條件見2.3.2節(jié)。硫脲的( )ESI二級(jí)質(zhì)譜圖見圖1。優(yōu)化后的硫脲標(biāo)準(zhǔn)溶液的HPLCMS/MS色譜圖見圖2。
3.3樣品前處理?xiàng)l件的優(yōu)化
3.3.1不同提取劑對(duì)硫脲提取效果的影響比較了用氯仿、甲醇、乙醇、乙腈和水作提取劑的提取效果。在2.0g粉碎后的面條樣品中加入11.6mg/L硫脲標(biāo)準(zhǔn)溶液1.0mL,待溶液完全被樣品吸收后,再分別用氯仿、甲醇、乙醇、乙腈和水進(jìn)行超聲波振蕩提取。按前述LCMS/MS方法測定硫脲的提取效率。結(jié)果表明,氯仿幾乎無法提取出硫脲,甲醇、乙醇、乙腈和水的提取效率分別為86.5%,70.0%,67.1%和88.3%,可見以水作提取劑的效率最高。但用水提取時(shí),樣品中的淀粉及其它添加劑也會(huì)被提取出來,導(dǎo)致提取液混濁且粘稠,后續(xù)處理很麻煩;而用甲醇和乙醇提取雖然效率略低,但提取液較干凈,處理過程簡便快捷。因此結(jié)合二者的優(yōu)點(diǎn),考慮用甲醇或乙醇和水的混合溶劑進(jìn)行提取。分別考察了甲醇比例為20%~80%時(shí)的提取效果和乙醇比例為20%~80%時(shí)的提取效果,結(jié)果見表1。由表1可見,80%乙醇水混合溶劑的提取效果最佳。表1不同比例的醇和水對(duì)硫脲的提取效果
3.3.2提取時(shí)間對(duì)硫脲提取效果的影響考察了超聲波提取10,15,20,25和30min時(shí)的提取效果,其回收率分別為87.3%,88.1%,86.3%,85.6%和85.8%。可見超聲波提取時(shí)間對(duì)硫脲的提取效果影響不明顯,超聲10min后提取率已基本穩(wěn)定。本實(shí)驗(yàn)選擇超聲波提取時(shí)間為15min,可滿足分析要求。
綜合以上結(jié)果,確定樣品的最佳前處理?xiàng)l件為2.2節(jié)所述。由于采用MRM方式測定,避免了樣品基體雜質(zhì)的干擾,故樣品提取后無需凈化即可直接上機(jī)分析,簡便快速,回收率較高。
3.4線性范圍、線性方程與檢出限
取硫脲標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液逐級(jí)稀釋成0.501,1.002,2.004,5.01,10.02和20.04mg/L的系列標(biāo)準(zhǔn)溶液,進(jìn)行LCMS/MS分析。以峰面積(A)和質(zhì)量濃度(ρ,mg/L)作定量工作曲線,線性方程為A=1209ρ-30.91,相關(guān)系數(shù)為0.9999,在0.5~20mg/L濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。當(dāng)樣品中的硫脲超過此線性范圍時(shí),可適當(dāng)加大樣品的稀釋倍數(shù)。以信噪比S/N=3確定樣品的檢出限為0.5mg/kg,采用標(biāo)準(zhǔn)添加法進(jìn)行實(shí)測確定硫脲的定量下限為5.0mg/kg,可滿足米面制品中對(duì)硫脲的檢測要求。
3.5回收率和精密度
取不含硫脲的面條和米粉樣品各3組,分別加入5.01,10.02和50.10mg/kg硫脲標(biāo)準(zhǔn)溶液,待完全被樣品吸收后,按實(shí)驗(yàn)方法測定硫脲的回收率,每組樣品平行測定6次,結(jié)果見表2。由表2可見,面條樣品中硫脲在添加水平5~50mg/kg,其回收率為83%~89%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為0.8%~4.0%;米粉樣品中硫脲在添加水平5~50mg/kg,其回收率為88%~90%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.7%~3.3%。面條空白及加標(biāo)樣品的HPLCMS/MS總離子流色譜圖見圖3a和b。本方法回收率較難達(dá)到90%以上,可能是基質(zhì)表2標(biāo)準(zhǔn)加入樣品中硫脲的回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差。